链霉亲和素磁珠

链霉亲和素磁珠

产品简介

重庆渝恩素能科技有限公司提供的链霉亲和素磁珠，是由超顺磁性聚合微球与高纯度链霉亲和素（SA）共价结合而成，链霉亲和素-生物素（SA-Biotin）具有极高的结合亲和力 （Kd=10-15 mol/L），可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子，在生物领域具有广泛的应用。本公司提供的1.0 μm链霉亲和素磁珠具有较高的链霉亲和素载量和极高的亲水性；具有良好单分散性、粒径均一性、超顺磁性，以及快速的磁响应速度；具有优异的重悬浮及分散能力，沉降速率低，有效确保高的抗体偶联量，有利于捕获目标分子及实现磁性分离，可满足不同试剂的研发和生产要求。

产品信息

XC-1000SA  1μm 链霉亲和素磁珠 透射电镜图

链霉亲和素磁珠结合生物素化分子方案

1、常用的缓冲液：

1.1  Buffer I（生物素化核酸）：10mM Tris-HCl （pH=7.5），1mM EDTA，1M NaCl，0.01%~0.1%Tween-20

1.2  Buffer II（生物素化蛋白）：Tris或PBS（pH=7.4）， 0.01% Tween-20，0.01%~0.1% BSA 

2、结合生物素化核酸

2.1 将磁珠置于漩涡振荡器，让磁珠重悬分散。用移液器移取 200 μL 磁珠到新的离心管中。进行磁分离操作后去除上清液，取下离心管。 备注：取用的磁珠用量根据生物素化分子的量和磁珠的载量进行比例配置，建议比例为1-2 倍。

2.2 加入最少1 mL Buffer I （大于1ml时，和取用磁珠体积相等）到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁分离操作后去除上清液。

2.3 重复“步骤 2.2”一次。

2.4 加入 500 μL 的用 Buffer I 稀释的生物素化核酸（使磁珠浓度为 2 mg/mL），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合 30 min。

2.5 磁性操作后将上清液转移至新的离心管。

2.6 按“步骤 2.2”的方法洗涤磁珠三次。

2.7 根据后续实验的要求，加入合适的低盐缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化核酸步骤完成。磁珠可用于后续操作。

2.8 用户可以通过测定反应前后核酸的浓度，计算结合到磁珠上的核酸量【（反应前浓度-反应后浓度）× 反应溶液体积】。

3. 结合生物素化蛋白操作流程

3.1 将磁珠瓶置于漩涡振荡器上 30 s，让磁珠重悬分散。用移液器移取 100 μL 磁珠到新的离心管中。进行磁分离操作后去除上清液，取下离心管。 备注：取用的磁珠用量根据生物素化分子的量和磁珠的载量进行比例配置，建议比例为1-2倍。

3.2 加入最少1 mL Buffer II （大于1ml时，和取用磁珠体积相等）到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁分离操作后去除上清液。

3.3 重复“步骤 3.2” 两次，共洗涤三次。

3.4 加入 1 mL 用 Buffer II 稀释的生物素化蛋白（使磁珠浓度为 2-10 mg/mL），充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合 15-30 min。

3.5 磁性操作后将上清液转移至新的离心管。

3.6 按“步骤 3.2”的方法洗涤磁珠三次。

3.7 根据后续实验的要求，加入 Buffer II 或其他合适的缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化蛋白步骤完成。磁珠可用于后续操作。

注意事项

1、磁珠不可冷冻；

2、每次磁性分离的时间应不少于 1 min。

3、移取磁珠前应充分震荡重悬均匀，操作过程中应避免产生气泡；

4、建议使用质量好的移液器吸头和反应管，避免因粘附磁珠及溶液而造成损失；

5、生物素化分子的大小会影响磁珠的载量，用户需要根据实验确定磁珠对特定生物素化分子的载量；

6、生物素化分子的加入量应为磁珠载量的 1~2 倍，以使磁珠饱和。

订货信息